細胞培養常見問題的解答

1.何時須更換培養基？

視細胞生長密度而定，或遵照細胞株基本資料上之更換時間，按時更換培養基即可。

2.可否使用與原先培養條件不同之培養基？

不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應之細胞培養基，若驟然使用和原先提供之培養條件不同之培養基，細胞大都無法立即適應，造成細胞無法存活。

3.如何選用特殊細胞系培養基？

培養某一類型細胞沒有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞，很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長。總之，選MEM做粘附細胞培養、 RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個好的開始。 

4.培養細胞時應使用5 %或10% CO2？或根本沒有影響？

一般培養基中大都使用HCO3-/CO32-/H+作為pH的緩沖系統，而培養基中NaHCO3的含量將決定細胞培養時應使用的CO2濃度。當培養基中NaHCO3含量為每公升3.7 g時，細胞培養時應使用10 % CO2；當培養基中NaHCO3為每公升1.5 g時，則應使用5 % CO2培養細胞。

5．冷凍管應如何解凍？

取出冷凍管后，須立即放入37°C水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內全部融化，并注意水面不可超過冷凍管蓋沿，否則易發生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時，必須注意安全，預防冷凍管之爆裂。

6.怎樣離心回收細胞？

欲回收動物細胞，其離心速率一般為300xg (約1000rpm)，5 - 10分鐘，過高之轉速，將造成細胞死亡。

7.細胞冷凍培養基之成份為何？

動物細胞冷凍保存時經常使用的冷凍培養基是含5 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide)和90 - 95 %原來細胞生長用之新鮮培養基均勻混合之。注意：由于 DMSO稀釋時會放出大量熱能，故不可將DMSO直接加入細胞液中，必須使用前先行配制完成。

8.應如何避免細胞污染？

細胞污染的種類可分成細菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉漿菌。主要的污染原因為無菌操作技術不當、操作室環境不佳、污染之血清和污染之細胞等。嚴格之無菌操作技術、清潔的環境、與品質良好之細胞來源和培養基配制是減低污染的好方法。

9.購買之細胞冷凍管經解凍后，為何會發生細胞數目太少之情形？

研究人員在冷凍細胞之培養時出現細胞數目太少，大都是因為離心過程操作上的失誤，造成細胞的物理性損傷，以及細胞流失。建議細胞解凍后不要立刻離心，應待細胞生長隔夜后再更換培養基即可。

10.購買之細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因？

研究人員在細胞培養時出現存活率不佳，原因可歸納為：培養基使用錯誤或培養基品質不佳。血清使用錯誤或血清的品質不佳。解凍過程錯誤。冷凍細胞解凍后，加以洗滌細胞和離心。懸浮細胞誤認為死細胞。 培養溫度使用錯誤。細胞置于–80°C太久。

11.什么培養基中可以省去加酚紅？

酚紅在培養基中用作PH值的指示劑：中性時為紅色，酸性時為黃色，堿性時為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類激素的作用，（特別是雌激素）。為避免固醇類反應，培養細胞，尤其是哺乳類細胞時，用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測，一些研究人員在做流式細胞檢測時，不使用加有酚紅的培養基。

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